Utilidad diagnóstica y terapéutica del análisis molecular en la queratoconjuntivitis vernal

Resumen

INTRODUCCIÓN La quertoconjuntivitis vernal (QCV) es un tipo de inflamación alérgica crónica y recurrente de la superficie ocular, caracterizada por la inflamación crónica de la conjuntiva con hipertrofia de las papilas conjuntivales tarsales y en algunas ocasiones con afectación visual por ulceración corneal. Las pruebas diagnósticas alergológicas habituales (prick, IgE específica) no resuelven el diagnóstico etiológico de las queratoconjuntivitis vernales (QCV). Es posible que la respuesta de hipersensibilidad sea local. MATERIAL Y MÉTODOS Nuestro objetivo fue valorar hipersensibilidad mediada por IgE por técnica de microarrays en lágrima y suero de pacientes distribuidos en tres grupos 1. Pacientes con conjuntivitis vernal (25 pacientes). 2. Pacientes alérgicos al polen de gramíneas con conjuntivitis estacional (50 pacientes). 3. Controles población sana procedente de Hemodonación (50 pacientes). En el caso de detectar alérgenos desencadenantes se instauró inmunoterapia (ITE) específica durante 1 año. RESULTADOS No se obtuvieron respuestas en los microarrays con lágrima pero si con suero: El 44% de los pacientes con QCV respondieron al n Lol p1, alérgeno predominante en nuestra atmósfera. Las siguientes respuestas más frecuentes fueron al n Cyn d1 (36% de las QCV), 22% al grupo 4 y 6 de gramíneas, 20% al grupo 5 y 8% a profilinas de polen de árboles. El 8% de QCV respondieron al r Der p1 y r Der p2, y un 12% a ovomucoide (n Gald1) de la clara de huevo. Un 8% respondieron a LTPs de avellana y melocotón. Con el método de prick+IgE fueron positivos a pólenes el 4,7% de QCV y no detectamos alérgicos a ácaros ni a alimentos. Tras instaurar ITE dirigida por arrays, 36 de untotal de 37 polínicos mejoraron, y en el caso de QCV, 14 de los 14 vacunados mejoraron, con una p<0.001. CONCLUSIONES Las pruebas in vitro basadas en componentes alergénicos permitieron caracterizar con gran detalle los perfiles de sensibilización de los pacientes con conjuntivitis. La cuantificación de los anticuerpos IgE tanto frente a componentes alergénicos específicos como a componentes de reactividad cruzada, además de contribuir a identificar la fuente alergénica sensibilizante permite un tratamiento de evitación y una inmunoterapia mas precisa y dirigida a la etiología. Con análisis molecular logramos diagnosticar un 12% de pacientes más que con el prick e IgE. La IT dirigida por arrays logra una mejoría clínica en QCV. Los pacientes que no recibieron IT no mejoraron. BIBLIOGRAFÍA 1. Friedlaender MH. Ocular allergy. Curr Opin Allergy Clin Immunol 2011;11:477-82 2. La Rosa M, Lionetti E, Reibaldi M, Russo A, Longo A, Leonardo S, Tomarchi S, Avitabile T, Reibaldi A. Allergic conjunctivitis: a comprehensive review of the literatura. Ital Pediatr 2013; 39:18 3. Leonardo A, Bonini S. In visual function affected in severe ocular allergies?. Curr Opin Allergy Clin Immunol 2013; 13:558-62 4. Bielory L. Allergic and immunologic disorders of the eye. Part II: ocular allergy. J Allergy Clin Immunol 2000;106:1019-32 5. Schultz BL. Pharmacology of ocular allergy. Curr Opin Allergy Clin Immunol 2006;6(5):383-9 6. Johansson SG, Bieber T, Dahl R, Friedmann PS, Lanier BQ,Lockey RF et al. Revised nomenclature for allergy for global use: report of the nomenclature review committee of the World Allergy Organization. J Allergy Clin Immuno 2004; 113(5): 832-6 7. Bielory L, Katelaris CH, Lightman S, Naclerio RM. Treating the ocular component of allergic rhinoconjunctivitis and related eye disorders. MedGenMed 2007; 15:9(3): 35. Review 8. Leonardi A, Bogacka E, Fauquert JL, Kowalski ML, Groblewska A, Jedrzejzak-Czechowicz M, Doan S, Marmouz F, Demoly P, Delgado L. Ocular allergy: recongnizing and diagnosins hypersensitivity disorders of the ocular surface. Allergy 2012: 11:1327-37 9. Leonardi A, Lazzarini D, Bortolotti M, Piliego F, Midena E, Fregona I. Corneal confocal microscopy in patients with vernal keratoconjunctivitis. Ophtalmology 2012; 119:509-15 10. Bousket J et al. Allergic rhinitis and its impact of asthma (ARIA): achievement in 10 years and future needs. Allergy 2010;19:1212-21 11. Grouin JM, VIcaut E, Jean-Alphonse S, Demoly P, Wahn U, Didier A, Beaumont O, Montagut A, Le Gail M, Deville P. The average adjusted symptom score, a new primary efficacy end-point for specific allergen immunotherapy trials. Clinical et Experimental Allergy 2011; 41:1282-1288 12. Fernández-González D, Rodriguez Rajo FJ, González Parrado Z, Valencia Barrera RM, Jato V, Moreno Grau S. Differences in atmospheric emissions of Poaceae pollen and Lol p1 allergen. Aerobiología 2011;27(4):301-309 13. Virchow JC, Kay S, Demoly P, Mullol J, Canonoca W, Higgins V. Impact of ocular symptoms on quality of life (QoL), work productivity and resource utilisation in allergic rhinitis patients-an observational, cross sectional study in four countries in Europe. J Med Econ 2011;14:305-314 14. World Health Organization (WHO). Fact sheet Nº. 307 on Asthma. 2011. 15. Bielory L, Mongia A. Current opinión of immunotherapy for ocular allergy. Curr Opin Allergy Clin Immunol 2002; 2:447-52 16. Khan MD Knea. A study of 530 cases of vernal conjunctivitis from the North West Frontier Porvince of Pakistan. Pak J Ophtalmol 1986;2:111-114 17. Spadavecchia L, Fanelli P, Tesse R. Prognosis and treatment of Vernal keratoconjunctivitis in pediatric age: pilot study on 197 patients. Minerva Pediatr 2010;62:239-44 18. Harwanegg C, Hiller R. Protein microarrays for the diagnosis of allergic diseases: state of the art and future development. Eur Ann Allergy Immunol 2006; 38:232-6 19. Gonzalez Buitrago JM, Ferreira L, Isidoro M, Sanz C, Lorente F, Davila I. Proteomic approachez for identifying new allergens and dianosing allergic diseases. Clin Chem Acta 2007;385:21-7 20. Wohrl S, Vigl K, Zehetmayer S, et al. The performance of a component bases allergen microarray in clinicla practice. Allergy 2006;61:633-9 21. Eigenmann PA. Component-resolved diagnosis in food alllergy, are microarrays helpful to the clinicial?. Allergy 2008;63:1519-20 22. Salcedo G, Diaz Perales A. Component resolved diagnosis of allergy: more is better?. Clin Exp Allergy ,2010 Jun;40(6):836-8 23. Ballmer-Weber BK, Skamstrup Hansen K, Sastre J, Anderson K, Batscher I, Ostling J, Dahl L, Hanschmann KM, Holzhauser T, Poulsen LK, Lidholm J, Vieths S. Componet resoñved in vitri diagnosis of carrot allergy in three different regions os Europe. Allergy 2012;67:758-66 24. Rodríguez Lajo FJ, Jato V, González Parrado Z, Elvira-Rendueles B, Moreno Grau S, Vega Maray AM, Fernández González D, Asturias JA, Duárez Cervera M. The combination of airborne pollen and allergen quantification to reliably assess the real pollinosis risk in different bioclimatic areas. Aerobiologia 2011;27(1): 1-12 25. Sastre J, Landivar ME, Ruiz-García M, Andregnette-Rosigno MV, Maillo I. How molecular diagnosis can change allergen-specific immunotherapy prescription in a complex pollen area. Allergy 2012;67. 709-711